|
"Иммунология гемопоэза" HI 2/2006 стр.56
"Иммунология гемопоэза" HI 2/2006 стр.56
IMMUNOPHENOTYPICPECULIARITIES OF
MOBILIZED STEM (CD34+) CELLS IN BLOOD
FROM PATIENTS WITHSEVERE SPINAL CORD INJURY
Abstract
Imrnimoptienotype of mobilized stem
blood celts (CD34+) was studied in 29 patients with late post-traumatic spinal
lesions. The CD34+ cells demonstrated different levels of expression of CD45,
CD38, monomorphic determinants HLA-DR and gp130 epitopes. Most patients
presented with a CD34+ cell fraction with no or low expression of common leukocytic
antigen CD45. Only 2 patients had >15% of HLA-DR-CD38- cells in the CD34-
fraction. A common transducer molecule of interleukin-6 family cytokines gp130
was expressed on stern (CD34+) cells in all the cases, 26% of the patients
had an activated gp130 phenotype. i.e. a combination ofC7+ and Al- epitopes.
Key words: spinal cord injury, CD34, CD45, gp130
epitopes.
Работа выполнена в рамках отраслевой программы РАМН «Новые
клеточные технологии - медицине». В период с 2003 по 2005 гг. интратекальное
введение мобилизованных аутологичных стволовых клеток (MACK) проведено 78 пациентам с травматической
болезнью спинного мозга, в 61% случаев отмечен положительный клинический
эффект в виде появления или улучшения двигательной активности в паретичных
конечностях, улучшения функции тазовых органов, а также частичного.
Трансплантация MACK — это новое направление в неврологии, к механизм восстановления
(улучшения) иннервации интратекально вводимыми стволовыми клетками не известен.
Трансплантация аутологичных стволовых мобилизованных 1емопоэтических клеток
наиболее часто применяется в онкологии и онкогематологии. Суть метода
заключается во введении пациенту для восстановления уничтоженного
химиотерапией гемопоэза обогащенной CD34+ клетками фракции мононуклеаров крови, выделенной
лейкаферезом. Подобный «заместительный» механизм действия, то есть генерация
нейронов из CD34+
стволовых клеток при их интратекальном введении больным спинальной травмой,
представляется маловероятным, хотя и не исключен полностью.
Необходимым условием применяемой нами лечебной процедуры являлась
мобилизация стволовых (CD34+) клеток в периферическое кровяное русло (этот факт был
подтвержден у всех больных) под действием колониестимулирующих факторов. По
этой причине, не исключая, в принципе, роли CD34- фракции интратекально трансплантируемых
клеток, мы в рамках данной работы, в первую очередь, сосредоточились на
детальном изучении CD34-позитивных
стволовых клетках, т.е. MACK.
Определенный ключ к разгадке проблемы может дать углубленная
характеристика качественного состава СD34+ MACK с позиции возможной негемопоэтической коммитированности этих
клеток. Для ответа на этот вопрос нами проведено исследование экспрессии на CD34+ MACK молекул CD45 и коэкспрессии HLA-DR и CD38. Другим аспектом работы явилось
изучение на CD34+клетках экспрессии и активации рецептора gp130 — трансдуцерной молекулы цитокинов семейства интерлейкина-6
(ИЛ-6). В гемопоэтических и негемопоэтических стволовых клетках gp1ЗО является корецептором. необходимым для осуществления пролиферативного
и дифферениироночного действия следующих цитокинов: ИЛ-6, ЦНТФ (цилиарный
нейротрофный фактор), Л ИФ (лейкоз-ингибирующий фактор), ОМ (онкостатин М),
КТ-1 (кардиотрофин-1) и ИЛ-11 [1; 2: 5]. Активация gp130 под действием того или иного цитокина может быть оценена на
основании эпитопной структуры gp130 [6].
Методика исследования
В исследование включены 29 пациентов позднего периода
травматической болезни спиннога мозга (от 3 до 10 лет после травмы). Возраст
больных — 17-65 лет
Мобилизация и сбор аутологичных стволовых клеток крови
осуществлялись по стандартной методике, рекомендованной и утвержденной
Европейским обществом трансплантации костного мозга. В качестве
колонисстимулирующего фактора применен нейпоген.
Стволовые клетки и их субпопуляции в лейкоконцентрате определяли
методом прямой иммунофлуоресценции с последующей проточной цитометрией. Использовали
моноклональные антитела (МКА) к CD34 НРСА-2, меченные фикоэритри-ном /РЕ/ (Beckion Dickinson, США), контролем служил мышиный IgGl-PE. В исследованиях субпопуляций стволовых клеток
использовали конъюгаты МКА к СО34 с РЕ/Су5 FITC.
Экспрессия
молекулы CD45
изучена на мобилизованных стволовых CD34+ клетках у всех 29 пациентов. Использовали МКА к CD45, напрямую меченные FITC (DakoCytomation, Дания). Определение экспрессии молекул HLA-DR (молили с использованием напрямую меченых антител - HLA-DR-PE и CD3S-FITC (Becton Dickinson, США).
МКА к трансдуцерному рецептору gp130 предоставлены J. Вгосhier (INSERM,
Франция). Использовали антитела к 2 эпитопам молекулы: А1 в сайте димеризации и
С7 в другом функционально активном домене. Конъюгаты этих антител с РЕ/Су5 (для
А1) ификоэритрином (для С7) были получены совместное R.Jones (HMDS.
Leeds UK)
Анализ данных проводили на проточном цитометре FACScan (Becton Dikinson, США). Субпопуляции стволовых клеток
изучали в гейте CD34+
клеток с низкими (близкими к таковым для лимфоидных клеток) характеристиками
светорассеяния лазерного луча (Low SSC).
Результаты исследования
Антиген CD45 экс премирован на клетках крови за исключением эритроцитов
-незрелых предшественниках, лимфоцитах, гранулоцитах, моноцитах. По мере созревания
клеток крови экспрессия CD45 на них возрастает. Стволовые гемопозтические клетки
характеризуются различными уровнями экспрессии CD45 — от незначительной до выраженной.
Наличие CD45 на стволовых
гемопоэтических клетках крови и костного мозга положено в основу одного из
наиболее известных протоколов определения этих клеток - ISHAGE [3]- У 21 из 29 больных с травматической болезнью спинного
мозга среди CD34+
клеток выявлялась отчетливая популяция клеток с крайне слабой экспрессиой
(ниже уровня на гранулоцитах) или отсутствием CD45. У 5 больных (17%) процент CD45- клеток среди CD34+ клеток был небольшим (5-18,9%). у 10
(34%) - умеренным (24-49%) и у 6 (21%) - высоким (62-98%). В 8 случаях (27%)
СО45-негативная фракция CD34+ клеток отсутствовала. На рис. 1 приведен пример слабой
экспрессии и полного отсутствия CD45 на 98% CD34- клеток, отчетливо видна CD45 фракция.
Экспрессия CD34 характерна не только для гемопоэтических, но и для стромальных
предшественников, которые составляют небольшой процент в пределах фракции CD34+CD38-HLA-DR- [7]. Для Более детального изучения этого вопроса нами
проведен анализ экспрессии CD38 и HLA-DR на мобилизованных CD34+ клетках крови 12 больных с травматической болезнью
спинного мозга. Пропорция CD38-HLA DR- клеток
среди CD34+ клеток в
большинстве случаев была незначительной (менее 9% у 10 больных) и лишь у 2
больных составила 16% и 23% (рис. 2). В обоих случаях с выраженной пропорцией HLA-DR-CD38- стволовых (CD34+) клеток большинство CD34+ клеток не имело на мембране CD45. В приведенном примере СD45-негативная фракция составила 98%.
Особое внимание нами было уделено оценке экспрессии и активации на
мобилизованных стволовых клетках трансдуцерного рецептора цитокинов семейства
интерлейкина-6 — молекуле gp130. Ранее
подобных исследований в России и за рубежом не проводилось. У 15 больных с
травматической болезнью спинного мозга изучены 2 эпитопа молекулы —
функциональный эпитоп С7, участвующий в передаче сигнала лейкоз-ингибирующего
фактора (ЛИФ) и онкостатина М (ОМ), а также функциональный эпитоп A1, вовлеченный в димеризацию gp130 поддействием любого цитокина семейства ИЛ-6 [1]. Различные
уровни экспрессии gp130
на CD34+ клетках имели
место у всех пациентов: в 13 случаях эпитоп С7 присутствовал на всех CD34+ клетках, в 9 из них отмечена
коэкспрессия эпитопа А1, что соответствует не активированному состоянию gp130 [6]. У 4 больных мобилизованные стволовые клетки
мономорфно экспремировал и эпитоп С7, а эпитоп А1 отсутствовал или
присутствовал лишь на части клеток. Подобная эпитопная структура характерна для активации
молекулы gp130 под
действием ИЛ-6, ИЛ-11, кардиотрофина
1 и цилиарного исйротрофного фактора |6]. У 2 больных наблюдалась экспрессии
эпитопа А1 при практически полном отсутствии эпитапа С7. В гематологических
системах (клетки гемобластеноп, стволовые гемопоэтические клетки) такое
сочетание эпигонов мембранного gpI30 не описано, и теоретически это может соответствовать начальным
этапам сигналинта ЛИФ и ОМ, еще не приведшим к гетсродимеризации gp130. Различные варианты экспрессии gp130 представлены на рис.3.
Полученные нами
данные свидетельствуют о гетерогенности мобилизованных стволовых (CD34+) клеток крови больных с травматической
болезнью спинного мозга по экспрессии общелейкоцитарного антигена CD45. У большинства пациентов в популяции MACK присутствовала отчетливая фракция СD45-негативных клеток (CD34+CD45-). Согласно данным литературы, именно
эти клетки, так же как и CD38-HLA-DR- клетки потенциально могут
дифференцироваться в негемопоэтическом направлении [7]. На сегодняшний день
нет методов прямого подтверждения нейрональной или глиальной коммитированности
мобилизованных стволовых клеток. Не исключена возможность приобретения СD45-негативными MACK негемопоэтической направленности дифференцировки в условиях
специфического микроокружения при интратекальном введении; для CD45+CD34- клеток подобный ход развития событий,
согласно современным представлениям, полностью исключен.
Наиболее перспективным, на наш взгляд, в проверке гипотезы
«заместительной» роли MACK представляется исследование возможности индукции нейрональной или
глиальной дифференцировки стволовых клеток прямым бес ниток и новым
воздействием на gp130.
Ранее нами подобный механизм был установлен для гемопоэтических стволовых
клеток [2; 4], однако на нейрональных предшественниках не изучался.
Представленные в работе данные свидетельствуют об экспрессии gpl30 на MACK
(CD34+) как в
неактивированном состоянии (эпитопы А1+С7+), так и в активированном (А1-С7+).
Более того, в 2 случаях отмечено практически полное отсутствие эпигона С7,
что, теоретически, может иметь место на начальных этапах сигналинга ОМ и ЛИФ.
Нами не ставилось задачи оценить эффективность лечения последствий
травмы с помощью МАСК в зависимости от наличия в их популяции CD45 - негативных клеток и от активационного статуса gp130. Положительные клинические эффекты отмечены и у больных с
отсутствием СD45-негативных
MACK. Это говорит о
возможности терапевтического эффекта не только CD34+CD45 MACK, но и вводимых одновременно с ними СD34-негативных или CD34+CD45+ клеток. На сегодняшний день
«заместительный» механизм действия MACK (упрощенно говоря, генерация из них нейронов) представляется
наиболее уязвимым и трудно доказуемым. Представляется очевидным, что важную
роль в восстановлении или улучшении иннервации тканей под действием MACK могут играть процессы индукции роста нервных отростков, их
миелинизации, ангиогенеза. а также целый ряд других факторов.
Список литературы
1.Тупицын Н.Н. Гематология и трансфузиология. 2001. Т.46,
№4. С.9-14.
2.Тупицын Н.Н., Андреева Л.Ю., Вулъфова Ю.И.
и др. Гематология и
трансфузиология. 2002.Т.47. №2. С.3-13 .
3.Allan
D.S., KeeneyM., Howson-Jan К. Bone Marrow
Transplant. 2002. Vol.29.
Р.%7-72.
4.Aulissier P., De
VosJ., LiautardJ., Tupitsyn N. et al. International Immunology. 1998. V.10, N12. P.1881-9.
5.Rose-John
S. Trends in Biotechnology. 2002. \bl.20, N10. P. 417-9.
6.Tupitsyn N.N., Kadagidze
Z.G., Gaillard J.-P. el al. Clin. Lab. Haematol. 1998. V.20. P. 345-52.
7.Walter
E.K., OlwensJ., Lund-Johansen F. etal. Blood. 1995. Vbl.85. N9. P. 2422-35.
 |
Рис. 1. Мобилизованные стволовые (CD34+) клетки крови, не имеющие на мембране
шгтигена CD45:
А — характеристик и рассеяния света лазерного луча клетками цитаферезного
продукта. По оси X — прямое
светорассеяние (FSC)
в обычных единицах (канал детектора); по оси Y (на рисунках 1А, 1В, 1C, ID) - боковое светорассеяние (SSC);
В - стволовые клетки (CD34+) в гейте R1 составляют 0.4% от общей клеточной
популяции. По оси X (на рисунках
1В, 1C, ID) — интенсивность
флуоресцентного сигнала в обычных единицах (lg канала флуоресценции) по PE/FL2/;
С - пороговое значение уровня экспрессии CD45 (РегСР - FL3), определенное на осно-
D - лишь 6% клеток гейта R1 (стволовые CD34+ клетки) экспрессируют CD45, остальные - СО45-негагипны. CD45- фракция содержит как абсолютно CD45-негативные клетки, так и клетки слабопозитивные
по CD45. На диаграммах А
и С представлено 2.000 событий, на диаграмме В — 50,000 и на диаграмме D — 200 событий (0.4% от 50.000, гейт Rl)
|
 |
Рис. 2. Экспрессия HLA-DR и CD3S на мобилизованных стволовых (CD34+) клетках крови:
А, В. С - коэкспрессия молекул. С, D, E, F - фракция HLA-DR CD38-
среди CD34+ клеток.
А - стволовые (CD34+) клетки составляют 0.44% от общего числа клеток (гейт R1);
В- контрольное окрашивание в гейте CD34+ (FL1 vs FL2);
С - 95% CD34+ клеток коэкспрессируют CD38 и HLA-DR на мембране. CD45-негативные стволовые клетки (CD34+) составили в этом случае 65%;
D - гейт стволовых клеток;
Е - контрольное окрашивание;
F - 23% CD34+
клеток не экспреесируют HLA-DR and CD38
(HLA-DR CD38 ). 98% стволовых (CD34+) клеток не экспрессируют CD45 в этом случае.
|
 |
Рис. 3. Мембранная экспрессия эпитопов gp130 на мобилизованных стволовых клетках
крови больных (гейт CD34+ клеток).
По оси X - интенсивность
флуоресцентного сигнала (канал флуоресценции), по оси Y – количество клеток. Заштрихованный пик – контрольное окрашивание,
незаштрихованный пик - окраска на эпитопы С7 (А, С) и А1 (В. D). Л. В - клетки пациента К.: gp130 не активирован (оба эпитопа присутствуют
на мембране). С, D – клетки пациента
В.: молекула gp130
находится в активированном состоянии (присутствует эпитоп С7. эпигон А1
практически отсутствует).
|
[an error occurred while processing this directive]
|